Jaringan Laboratorium Medis

Vol 8 No 2 (2026): November 2026
Artikel Hasil Penelitian

Analisis Cost Effectiveness Media Alternatif Berbasis Limbah Kulit dan Kepala Udang Dibandingkan Sabouraud Dextrose Agar untuk Pertumbuhan Trichophyton rubrum

PDF (English)
  • Afik Abdurrahman,
  • Sulaeman,
  • Ira Gustira Rahayu,
  • Yuliansyah Sundara Mulia
Afik Abdurrahman
Poltekkes Kemenkes Bandung
Sulaeman
Poltekkes Kemenkes Bandung
Ira Gustira Rahayu
Poltekkes Kemenkes Bandung
Yuliansyah Sundara Mulia
Poltekkes Kemenkes Bandung
DOI: https://doi.org/10.31983/jlm.v8i2.15088

Diterbitkan 2026-10-01

Kata Kunci

  • Hidrolisat limbah udang,
  • media alternatif,
  • Trichophyton rubrum,
  • SDA (Sabaroud Dextrose Agar),
  • ACER,
  • ICER
    • ...Selengkapnya
    Sembunyikan

Cara Mengutip

Abdurrahman, A., Sulaeman, Ira Gustira Rahayu, & Yuliansyah Sundara Mulia. (2026). Analisis Cost Effectiveness Media Alternatif Berbasis Limbah Kulit dan Kepala Udang Dibandingkan Sabouraud Dextrose Agar untuk Pertumbuhan Trichophyton rubrum. Jaringan Laboratorium Medis, 8(2), 117–127. https://doi.org/10.31983/jlm.v8i2.15088

Hak Cipta (c) 2026 Jaringan Laboratorium Medis

Creative Commons License

Artikel ini berlisensiCreative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.

Abstrak

Dermatofitosis merupakan salah satu infeksi jamur superfisial yang masih menjadi masalah kesehatan masyarakat, dengan Trichophyton rubrum sebagai salah satu penyebab utamanya. Sabouraud Dextrose Agar (SDA) merupakan media standar yang umum digunakan untuk kultur dermatofita, namun biaya produksinya relatif tinggi sehingga diperlukan alternatif yang lebih ekonomis. Hidrolisat limbah kulit dan kepala udang memiliki kandunganprotein, peptida, dan asam amino yang berpotensi dimanfaatkan sebagai bahan dasar media kultur alternatif. Penelitian ini bertujuan mengevaluasi efektivitas media alternatif berbasis hidrolisat udang (40%, 50%, 60%, 70%, 80%) terhadap pertumbuhan Trichophyton rubrum serta menilai perbedaan cost effectiveness dibandingkan dengan media SDA. Penelitian menggunakan rancangan quasi eksperimental post test only control group dengan tiga replikasi per media. Pertumbuhan diamati selama 14 hari dan diameter koloni diukur setiap 24 jam. Analisis dilakukan menggunakan uji statistik Kruskal-Wallis, sedangkan evaluasi ekonomi menggunakan Average Cost Effectiveness Ratio (ACER) dan Incremental Cost Effectiveness Ratio (ICER). Media alternatif 40-80% mendukung pertumbuhan sejak hari ke-2, dengan fase awal menunjukkan laju pertumbuhan lebih cepat dibanding SDA karena tingginya kandungan peptida kecil dan asam amino bebas, terutama asam glutamat yang cepat dimetabolisme melalui mekanisme Nitrogen Metabolite Repression. Pada fase lanjutan, media SDA memberikan pertumbuhan lebih stabil dan optimal karena tersedianya glukosa sebagai sumber karbon langsung, sementara media alternatif yang menggunakan sukrosa memerlukan hidrolisis enzimatis, degradasi nutrisi selama autoklaf dan pH tidak distandarisasi. Secara statistik tidak ditemukan perbedaan signifikan antar media (p = 0,998). Analisis cost effectiveness menunjukan bahwa media alternatif 40% merupakan formulasi yang paling cost effective dibandingkan dengan media yang lain berdasarkan rasio biaya terhadap pertumbuhan koloni. Media hidrolisat limbah udang efektif mendukung pertumbuhan Tricophyton rubrum dengan konsentrasi 40% sebagai pilihan ekonomis.

PDF (English)

Referensi

  1. Adnan, M., Zheng, W., Islam, W., Arif, M., Abubakar, Y. S., Wang, Z., & Lu, G. (2017). Carbon Catabolite Repression in Filamentous Fungi. International journal of molecular sciences, 19(1), 48. https://doi.org/10.3390/ijms19010048
  2. Ahmad, F., Khan, M. S., & Ali, R. (2020). Sabouraud dextrose agar as a standard medium for fungal growth: A review of composition and applicability. Journal of Medical Mycology, 30(2), 112-120. https://doi.org/10.1016/j.mycmed.2020.101032
  3. Aruna, G. L. (2018). Optimization of Environmental Parameters for Trichophyton rubrum Growth and its Antigen Production. Int J Health Sci Res. 8(1):54-59.
  4. Blechert, O., Zheng, H., Zheng, H., Zang, X., Wang, Q., Liu, W., Liu, W., & Liu, W. (2019). Influence of the cultivation medium and pH on the pigmentation of Trichophyton rubrum. PLOS ONE, 14(9).
  5. Dey, S. S., & Dora, K. C. (2014). Optimization of the production of shrimp waste protein hydrolysate using microbial proteases adopting response surface methodology. Journal of food science and technology, 51(1), 16–24. https://doi.org/10.1007/s13197-011-0455-4
  6. Drummond, M. F., Sculpher, M. J., Claxton, K., Stoddart, G. L., & Torrance, G. W. (2015). Methods for the economic evaluation of health care programmes (4th ed.). Oxford University Press.
  7. Dwiyanti, R. D., & Lutpiatina, L. (2021). Improved Mycology Media Formula of Corn and Cow’s Hair For Accelerate Superficial Mycosis Growth. Medical Laboratory Technology Journal, 7(2), 123. https://doi.org/10.31964/mltj.v0i0.391
  8. Jartarkar, S. R., Patil, A., Goldust, Y., Cockerell, C. J., Schwartz, R. A., Grabbe, S., & Goldust, M. (2022). Pathogenesis, Immunology and Management of Dermatophytosis. Journal of Fungi, 8(1), 39. https://doi.org/10.3390/jof8010039
  9. López-Sánchez, J., Ponce-Alquicira, E., Pedroza-Islas, R., de la Peña-Díaz, A., & Soriano-Santos, J. (2016). Effects of heat and pH treatments and in vitro digestion on the biological activity of protein hydrolysates of Amaranthus hypochondriacus L. grain. Journal of Food Science and Technology, 53(12), 4298-4307. https://doi.org/10.1007/s13197-016-2428-0
  10. Maldonado, À., Maldonado, J., Yela, R., & Moreno, E. (2022). Circular economy and its impact on environmental sustainability. Centro Sur, 6(4), 1-29.
  11. Rachmawati, F., Nursidika, P., & Fitrianingsih, P. (2022). Identifikasi Jamur Trichophyton sp. Penyebab Tinea Unguium Pada Petani Desa Mekarluyu Kabupaten Garut. Jurnal Penelitian Saintek, 2(27), 113-118. https://doi.org/10.21831/jps.v2i27.52528
  12. Rämä, T., & Quandt, C. A. (2021). Improving Fungal Cultivability for Natural Products Discovery. Frontiers in microbiology, 12, 706044. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.706044
  13. Ramadhan, D. H., Dewi, E. N., & Purnamayati, L. (2024). Characteristics of Shrimp Head Protein Hydrolysate Flour (Litopenaeus Vannamei) with Addition of Different Papain Enzym Concentrations. International Journal of Research Publication and Reviews, 5(8), 3315-3320.
  14. https://doi.org/10.55248/gengpi.5.0824.2204
  15. Rossi, N., Grosso, C., & Delerue-Matos, C. (2024). Shrimp Waste Upcycling: Unveiling the Potential of Polysaccharides, Proteins, Carotenoids, and Fatty Acids with Emphasis on Extraction Techniques and Bioactive Properties. Marine drugs, 22(4), 153. https://doi.org/10.3390/md22040153
  16. Sanders, G. D., Neumann, P. J., Basu, A., Brock, D. W., Feeny, D., Krahn, M., Kuntz, K. M., Meltzer, D. O., Owens, D. K., Prosser, L. A., Salomon, J. A., Sculpher, M. J., Trikalinos, T. A., Russell, L. B., Siegel, J. E., & Ganiats, T. G. (2016). Recommendations for Conduct, Methodological Practices, and Reporting of Cost-effectiveness Analyses: Second Panel on Cost-Effectiveness in Health and Medicine. JAMA, 316(10), 1093-1103. https://doi.org/10.1001/jama.2016.12195
  17. Senz, M., Keil, C., Schmacht, M., Palinski, S., Cämmerer, B., & Hageböck, M. (2019). Influence of Media Heat Sterilization Process on Growth Performance of Representative Strains of the Genus Lactobacillus. Fermentation, 5(1), 20. https://doi.org/10.3390/fermentation5010020
  18. Septiani Surya Puspita Sari, K. E. (2021). Profil dermatofitosis di Poliklinik Kulit dan Kelamin RSUP Sanglah Denpasar periode 2017-2018. E-Jurnal Medika Udayana, 10(4), 99. https://doi.org/10.24843/mu.2021.v10.i4.p17
  19. Silva, L. B. B. d., Oliveira, L. S. d., Furlan, T. B. P., Almeida, B. C. T., Garcia, M. T., Song, Y., Peres, N. T. d. A., & Carmo, P. H. F. d. (2026). Dermatophytosis: An Update on Global Epidemiology. Journal of Fungi, 12(7), 503. https://doi.org/10.3390/jof12070503
  20. Tudzynski B. (2014). Nitrogen regulation of fungal secondary metabolism in fungi. Frontiers in microbiology, 5, 656. https://doi.org/10.3389/fmicb.2014.00656
  21. Yeung, C. K., Glushka, J., Ball, R. O., & Brosnan, J. T. (2006). Negative effect of heat sterilization on the free amino acid concentrations in total parenteral nutrition solutions. Journal of Parenteral and Enteral Nutrition, 30(6), 492-496.
  22. Yuniarti, T., Prayudi, A., Supenti, L., Suhrawardan, H., & Martosuyono, P. (2021). Produksi dan Profil Kimia Hidrolisat Protein dari Hasil Samping Pengolahan Udang Segar. Jurnal Perikanan Universitas Gadjah Mada, 23(1), 63-69.
  23. Yunus, A. A., Ilza, M., & Karnila, R. (2021). Komposisi kimia tepung kulit dan kepala udang vanname (Litopenaeus vannamei). Jurnal Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Riau, 1-9.